制備型液相色譜(Preparative Liquid Chromatography, Prep-LC)是以獲取高純度、一定量目標化合物為核心目的的色譜技術,其分離原理與分析型液相色譜(Analytical LC)一致,均基于 “混合物中各組分與固定相、流動相之間作用力的差異”,實現組分在色譜柱內的遷移速度不同,最終達到分離效果。但制備型液相色譜在柱尺寸、樣品負載量、分離目的上與分析型有顯著區別(前者側重 “制備”,后者側重 “分析檢測”),其分離原理可從核心機制、關鍵作用力、分離過程三方面詳細解析。
一、核心分離機制:分配平衡與差速遷移
制備型液相色譜的本質是利用 “溶質(樣品組分)在固定相(色譜柱內填充物)和流動相(攜帶樣品的液體)之間的分配系數差異”,驅動各組分在色譜柱中以不同速度移動,從而實現分離。
分配平衡的定義
當樣品被流動相帶入色譜柱后,各組分將在固定相和流動相之間發生連續的溶解、吸附、解吸或離子交換等相互作用,并最終達到動態平衡。此時,組分在兩相間的濃度比稱為 “分配系數(K)”,公式為:
K = 組分在固定相中的濃度 / 組分在流動相中的濃度
差速遷移的結果
若某組分與固定相的作用力強(如吸附力、親和力高),則其分配系數 K大—— 該組分更傾向于 “停留在固定相上”,隨流動相向前遷移的速度慢。
若某組分與固定相的作用力弱(如吸附力、親和力低),則其分配系數 K小—— 該組分更傾向于 “溶解在流動相中”,隨流動相向前遷移的速度快。
最終,不同組分因遷移速度差異,在流經色譜柱后會先后從柱尾流出,通過檢測器(如紫外檢測器)識別后,收集目標組分的流出液,即可獲得高純度的制備樣品。
二、關鍵作用力:基于固定相類型的分離模式
制備型液相色譜的分離效果直接依賴于 “固定相的選擇”,不同固定相與組分的作用機制不同,形成了多種分離模式。其中,反相色譜(RP-HPLC)是制備型液相色譜中常用的模式,此外還有正相色譜、離子交換色譜、凝膠滲透色譜等,其核心作用力差異如下表所示:
1. 反相色譜
固定相特點:非極性(如 C18、C8 鍵合相)
流動相特點:極性(如水 - 甲醇、水 - 乙腈)
核心作用力:疏水作用(非極性組分與固定相間的疏水結合)
適用樣品類型:極性較弱的有機物(如藥物中間體、小分子化合物)
2. 正相色譜
固定相特點:極性(如硅膠、氨基鍵合相)
流動相特點:非極性(如正己烷 - 異丙醇)
核心作用力:極性作用(氫鍵、偶極 - 偶極作用)
適用樣品類型:極性較強的有機物(如糖類、有機酸)
3. 離子交換色譜
固定相特點:帶電荷基團(如磺酸基、季銨基)
流動相特點:緩沖液(如磷酸鹽緩沖液)
核心作用力:離子鍵作用(樣品離子與固定相電荷基團的靜電吸引)
適用樣品類型:離子型化合物(如氨基酸、蛋白質、核酸)
4. 凝膠滲透色譜
固定相特點:多孔凝膠(如聚苯乙烯凝膠)
流動相特點:與樣品互溶的溶劑(如四氫呋喃)
核心作用力:體積排阻作用(小分子進入凝膠孔,遷移慢;大分子被排斥,遷移快)
適用樣品類型:聚合物(如塑料、橡膠,用于分離不同分子量的聚合物)
三、完整分離過程(以反相制備型液相色譜為例)
制備型液相色譜的分離是一個 “樣品加載→柱內分離→組分流出→目標收集” 的連續過程,具體步驟如下:
1. 樣品預處理
制備前需對樣品進行純化(如過濾、萃取),去除雜質和不溶物,避免堵塞色譜柱;同時需將樣品溶解在與流動相初始比例一致的溶劑中,減少 “溶劑效應”(避免樣品與流動相極性差異過大導致的峰展寬)。
2. 樣品加載
通過進樣閥將大量樣品(通常為毫克至克級,遠高于分析型的微克級) 注入色譜柱頂端,樣品被流動相(初始極性較高,如 90% 水 + 10% 乙腈)攜帶,進入填充有 C18 固定相的色譜柱。
柱內梯度洗脫與分離
啟動梯度洗脫程序(逐漸提高流動相中有機相比例,如從 10% 乙腈升至 90% 乙腈):
極性較強的雜質:與 C18 固定相疏水作用弱,分配系數 K 小,隨初始流動相快速遷移,先流出色譜柱。
目標組分:與 C18 固定相疏水作用中等,隨流動相極性降低(有機相比例升高),逐漸從固定相上解吸,以中等速度遷移。
極性較弱的雜質:與 C18 固定相疏水作用強,分配系數 K 大,需更高比例有機相才能解吸,最后流出色譜柱。
3. 組分檢測與收集
流出液經過檢測器(如紫外 - 可見檢測器,根據目標組分的最大吸收波長設定檢測波長,如 254nm),檢測器將組分濃度信號轉化為色譜峰(即 “制備色譜圖”)。當目標組分的色譜峰開始出現時,啟動收集裝置(如自動餾分收集器),收集整個目標峰的流出液;當目標峰結束后,停止收集,避免混入相鄰雜質峰。
后處理
收集到的目標組分溶液需通過旋轉蒸發、冷凍干燥等方式去除流動相,最終得到高純度(通常>95%,甚至 99.9%)的固體或液體目標產物。
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